Метод заражения опытных животных

Этим методом устанавливают патогенность микроба для животных того или иного вида. При заражении животных учитывают влияние следующих факторов: вид и порода животного, его возраст и вес.
Истощенное животное значительно восприимчивее, чем упитанное.

Материал для прививок. Им может служить как чистая культура, так и патологический материал. В первом случае прививают молодые культуры в возрасте 16—36 час. Споровыми формами микробов труднее вызвать заражение.

Прививают культуры микроорганизмов, выращенные как в жидких средах, так и на плотных. Бульонные культуры вводят без разбавления, измерения их производят в миллилитрах.

Культуры с плотных сред предварительно эмульгируют физиологическим раствором. Измерение вводимого в раствор материала производят или в так называемых бактериологических петлях, или в количестве микробных тел в 1 мл. В первом случае агаровая культура, взятая нормальной петлей, имеющей в диаметре 3 мм, разводится в каком-либо определенном количестве физиологического раствора, например в 10 мл. Вводя в организм животного все это количество, говорят, что введена одна петля. При введении одного лишь мл из десяти говорят, что введено 0,1 нормальной петли и т. д.

Количество микробных тел в какой-либо кубической единице определяют по стандарту. Для каждого вида микроорганизма заготовляют стандарты, т. е. консервированную взвесь микробов, разведенных в физиологическом растворе и находящихся в запаянных пробирках. Количество микробов в 1 мл стандартной взвеси определенное, например 7 или 1, или 2 млрд. микробных тел.

Чтобы приготовить эмульсию микробов с таким же числом микробных тел, смытую с агара густую эмульсию микробов разводят в пробирке (такого же диаметра, как и стандартная) физиологическим раствором до тех пор, пока густота ее не будет соответствовать густоте эмульсии стандарта. Обычно для разведения по стандарту густой эмульсии берут немного, например 1 мл. физиологический раствор добавляют из градуированной пипетки, подсчитывая, сколько пойдет его для приведения смытой культуры к стандарту. Соответственно этому разбавляют остаток смытой культуры.

В тех случаях, когда дело приходится иметь с микробами, дающими на агаре сухие колонии, их предварительно растирают в агатовой ступке, добавляя по каплям физиологический раствор.

Заражение опытных животных часто производят и патологическим материалом: кровью, мозгом, различными паренхиматозными органами. Кусочки органов, которыми хотят произвести за ражение, предварительно растирают в ступке с физиологическим раствором. Иногда для лучшего растирания добавляют отмытый стерильный кварцевый песок. Полученную эмульсию процеживают через несколько слоев марли и фильтратом заражают.

Дозировки могут быть минимальные, не производящие на организм видимого эффекта, средние, от которых животное заболевает, но не погибает, и летальные, от которых животное погибает. Дозы рассчитывают по весу животного.

Наиболее распространенными способами заражения являются подкожный и внутривенный. У различных животных для заражения в венозную кровь выбирают различные вены. Так, кроликам вводят в ушные вены; собакам, кошкам и морским свинкам — в бедренные; мышам и крысам в хвостовые.

Дезинфекция птичников. Дезинфекция крольчатников -1 
Дезинфекция питомников промысловых животных и служебных собак. Дезинфекция при заболеваниях пчел -2 
Дезинфекция навоза -3 
Дезинфекция почвы. Дезинфекция предметов ухода за животными и сбруи -4 
Дезинфекция товарных вагонов -5 
Дезинфекция шкур и шерсти -6 
Дезинсекция -7 
Дератизация — уничтожение грызунов -8 
Патологоанатомическое вкрытие. Основные правила вскрытия трупов -9 
Вскрытие трупов крупных жвачных, мелких животных и птиц -10 
Протокол вскрытия. Порядок описания органов при вскрытии -11 
Взятие, сохранени и пересылка материала для патологогистологического исследования -12 
Техника изготовления патологоанатомических препаратов -13 
Судебно-ветеринарное исследование трупов -14 
Лабораторно-клиническая диагностика. Общие сведения по клинической диагностике -15 
Исследование сердечно-сосудистой системы -16 
Лихорадка -17 
Исследование мочи. Физическое исследование мочи -18 
Исследование мочи. Химическое исследование мочи -19 
Исследование мочи. Химическое исследование мочи (продолжение) -20 
Неорганизованные осадки мочи. Организованные осадки -21 
Исследование крови -22 
Физические свойства крови -23 
Определение билирубина в сыворотке -24 
Подсчет форменных элементов крови -25 
Лейкоцитарная формула. Лейкоцитарный профиль -26 
Методы исследования микробов. Бактериоскопический метод -27 
Окраска препаратов -28 
Исследование микробов в живом состоянии -29 
Специальные среды -30 
Специальные среды -31 
Индикаторы -32 
Способ фракционированных посевов на плотных питательных средах -33 
Физиологические свойства микробов -34 
Культивирование анаэробов -35 
Метод заражения опытных животных -36 
Подготовка животного и заражение его -37 
Оборудование бактериологического кабинета -38 
Бактериологическая диагностика важнейших инфекционных заболеваний. Сибирская язва -39 
Бактериологическая диагностика эмфизематозного карбункула и злокачественного отека -40 
Бактериологическая диагностика некробациллеза -41 
Бактериологическая диагностика брадзота овец и инфекционной энтеротоксемии овец -42 
Бактериологическая диагностика туберкулеза -43 
Бактериологическая диагностика паратуберкулеза -44 
Бактериологическая диагностика бруцеллеза -45 
Бактериологическая диагностика туляремии -46 
Бактериологическая диагностика пастереллеза - геморрагической септицемии (холеры кур, геморрагической септицемии свиней и прочих животных). Бациллярная рожа свиней -47 
Бактериологическая диагностика диплококковой септицемии телят. Паратиф телят и поросят -48 
Бактериологическая диагностика инфекционного аборта лошадей и мыта. Стригущий лишай -49 
Бактериологическая диагностика лептоспироза -50 
Бешенство. Материал для исследования -51 
Взятие и пересылка патологического материала для исследования на инфекционные заболевания -52 
Таблица. Лейкоцитарная формула домашних животных -53