Некробациллезы сельскохозяйственных животных. Пастереллез (геморрагическая септицемия)

Как энзоотия некробациллезы чаще всего наблюдаются в виде некротических поражений конечностей, ротовой и носовой полостей.

Для бактериологического исследования следует брать при наружных поражениях участки на границе здоровой и пораженной ткани. Выделения язв исвищевых ходов мало пригодны для бактериологических исследований, так как обычно загрязнены посторонними микробами. При поражении внутренних органов материал берется из некротических очагов. Исследование материала производится путем микроскопии, посевов и заражения животных.

Мазки окрашиваются разведенным фуксином или метиленовой синькой, или синькой по Мансону, или фуксином с синькой по Муромцеву. В окрашенных мазках обнаруживаются характерные длинные, четкообразные, неравномерно окрашенные нити.

Заражение мелких опытных животных (кроликов) производят внутрикожно или подкожно в верхней трети уха эмульсией материала или бульонной культуры. Через 24—72 часа после заражения на месте инъекции появляется некротический очаг, при микроскопии мазков из которого обнаруживаются характерные нити возбудителя некробациллеза.

Для получения культур возбудителя некробациллеза материал засевается в печеночный бульон с кусочками печени или полужидкий сахарный агар (с 0,15% агара и 0,5% глюкозы).

Ответ на основании микроскопического исследования дается в день поступления материала.

Срок для бактериологического исследования — до 10 дней.

Пастереллез (геморрагическая септицемия)

К этой группе заболеваний относится геморрагическая септицемия рогатого скота, свиней, кроликов, овец и птиц.

Материалом для бактериологического и бактериоскопического исследований служат при острых формах заболеваний кровь из сердца, экссудат легких, печень и селезенка; в подострых и хронических случаях — части различных пораженных органов. В тех случаях, когда труп не свежий и начинает разлагаться или материал приходится транспортировать на расстояние, направляется трубчатая кость. Мазки из трупа для обнаружения биполярной окраски пастерелл необходимо окрашивать леффлеровской синькой с последующей обработкой 1-процентным раствором уксусной кислоты (несколько секунд), разведенным фуксином, краской Муромцева или по Романовскому-Гимза. Микроскопический диагноз основывается на обнаружении в мазках трупа биполярно окрашивающихся овоидов и имёет значение только в острых случаях заболевания и падежа, когда исследуется свежий материал.

Бактериологическое исследование на пастереллез достигает своей цели, когда оно производится из оовершенно свежего материала или из глубоких частей измененных тканей. Посевы делаются на агар, бульон и сывороточные среды, pH 7,2—7,4.

Полученная культура проверяется микроскопически на чистоту и на неподвижность (висячая, раздавленная капля) и затем делается посев на пестрый ряд: среды с лактозой, глюкозой, сахарозой, дульцитом, сорбитом й маннитом и на среду, содержащую триптофан (бульон Нейслера, Хотингера, мартеновский и др.).

В сомнительных случаях, когда бактериологически не удается выделить чистой культуры пастерелл, производят заражение кролика, голубя или белых мышей (при отсутствии в питомнике спонтанного пастереллеза) суспензией исследуемых органов. Это позволит (без продления сроков исследований) получить ценные данные о вирулентности выделенного микроба, а также во многих случаях ускорит выделение чистой культуры и предотвратит заглушение роста пастерелл другой наслоившейся микрофлорой.

При использовании кроликов их рекомендуется предварительно проверить на бациллоносительство провокацией путем введения в каждое носовое отверстие по 2 капли 0,5-процентного водного раствора бриллиант- грюна (ежедневно в течение 3 дней). У кроликов — носителей пастерелл такие введения вызывают продолжительное гнойное истечение из носовой полости и исхудание.

Определение патогенности для лабораторных животных особенно важно в связи с непостоянством и неоднородностью биохимйческих свойств различных штаммов пастерелл.

Окончательный диагноз ставится с учетом эпизоотологических, клинических и патологоанатомических данных.

Срок исследования — 5 дней.

-1-  -2-  -3-  -4-  -5-  -6-  -7-  -8-  -9-  -10-  -11-  -12-  -13-  -14-  -15-  -16-  -17-  -18-  -19-  -20-  -21-  -22-  -23-  -24-  -25-  -26-  -27-  -28-  -29-  -30-  -31-  -32-  -33-  -34-  -35-