Морфология Diplоcoccus sерtiсus. Паратуберкулезный энтерит крупного рогатого скота и овец

Морфология Diplоcoccus sерtiсus. Пара туберкулезный энтерит крупного рогатого скота и овец

В мазках из крови и органов животных, погибших от диплококко-септицемий, а также в истечениях из половых органов больных и молоке больных маститом коров, овец и свиней, микроб имеет диплококка или короткого диплострептококка. Форма отдельных кок- овальная, иногда ланцетовидная. В организме животных диплококки зуют капсулу, которая видна при окраске по Романовскому-Гимза де блёднорозового ободка.

В мазках из молодых 24—48-часовых культур, выращенных на МПБ, полужидком агаре, при высевах из патологического материала а морфология диплококков такая же, как и в организме животных, апсула развита слабее или совсем отсутствует. В мазках из 5—6-суточных культур преобладает диплострептококко расположение клеток, капсулы отсутствуют. Для окраски мазков из культур пользуются фуксином, синькой флера, генциан-виолетом. По Граму диплококки красятся положино.

Диплококки не обладают самостоятельным движением, спор не образуют.

Культуральные свойства

D. septicus весьма требователен к питательным средам. На недоброкачественных, старых, щелочных или кислых средах он не растет. Особенно требовательны диплококки при выделении их из трупов животных. Лучшей средой для их культивирования является полужидкий агар, которым необходимо пользоваться при работе с ними в обязательном порядке. На МПА, МПБ диплококки могут погибнуть в течение 5—7 дней. В полужидком агаре без сахаров под вазелиновым масЛом при периодических пересевах один раз в 2—3 месяца диплококки сохраняются годами.

На мясо-пептонном агаре диплококки образуют мелкие прозрачные круглые с ровными краями изолированно лежащие колонии. Иногда они напоминают капельки росы. Особенно нежные колонии образуются при высевах из трупов животных и больных метритами или маститами. Старые колонии могут приобретать матовый оттенок.

В мясо-пептонном бульоне диплококки образуют равномерное помутнение с небольшим осадком. Пленка на поверхности среды и пристеночное кольцо не образуются.

В полужидком агаре диплококки растут в виде нежных растущих в нижней части агара, хлопьев. На агаре с 10% крови вырабатывают гемолизин, вследствие чего колонии на 3—4-й день окружены зоной просветления.
Диплококки желатину не разжижают, пигмента не вырабатывают. Молоко свертывают через 24—72 часа.

Биохимические свойства

Диплококки обладают активными биохимическими свойствами, разлагая многие из сахаров. Для дифференциации используется их способность сбраживать инулин, глюкозу, лактозу, маннит и не сбраживать арабинозу, рафинозу и дульцит. Для дифференциальных посевов названные сахара и спирты готовятся обычным способом с реактивом Андредэ.

Вирулентность

Из лабораторных животных наиболее чувствительны к искусственному заражению диплококками молодые белые мыши, кролики менее чувствительны. Морские свинки, белые крысы и голуби устойчивы к диплококкам. В диагностической работе необходимо использовать белых мышей.

Свежевыделенные 24—48-часовые культуры обладают обычно высокой вирулентностью: 0,1—0,5 мл бульонной или из полужидкого агара культуры при внутрибрюшинном введении убивают белую мышь за 18— 36 часов. Пяти-шестисуточные культуры имеют пониженную вирулентность. Старые культуры авирулентны.

Для испытания вирулентности необходимо пользоваться только све-жевыделенными одно-двухсуточными культурами, заражая внутрибрю- шинно мышей в дозе 0,3—0,5 мл.

Дифференциальные признаки диплококка септического приведены в таблице (см. приложение).

Срок исследования — 6 дней.

Паратуберкулезный энтерит крупного рогатого скота и овец

Для прижизненной диагностики паратуберкулезиого энтерита крупного рогатого скота и овец собирают кал от больных животных, отбирают обрывки слизистой оболочки, кусочки с кровью или комочки слизи, помещают в стерильные банки с притертыми пробками и направляют в лабораторию для бактериоскопического исследования.

С этой же целью производят соскобы из слизистой оболочки прямой кишки.

Материал пересылают либо в пробирках, либо в виде мазков, фиксированных нагреванием на предметных стеклах.

Для посмертной диагностики направляют отрезки пораженного кишечника и увеличенные брыжеечные лимфатические узлы, консервированные в 30-процентном стерильном водном растворе глицерина.

Для гистологического исследования материал направляют консервированным в 5—10-процентном растворе формалина.

Исследования производят:

1) методом микроскопии мазков, изготовленных из исследуемого материала;
2) методами обогащения:
а) 2 г кала или растертой стенки кишечника заливают 30 мл 15—50- процентного водного раствора антиформина, смесь тщательно встряхивают до получения гомогенной взвеси, выдерживают в течение 18 часов при температуре +25°C, центрифугируют;
б) осадок после удаления антиформина отмывают дистиллированной водой и делают мазки;
в) 2—4 г кала тщательно растирают в стерильной ступке и к нему прибавляют 25-процентный раствор поваренной соли до получения жидкой консистенции. Смесь набирают в центрифужную пробирку, прибавляют 2 мл бензина или лигроина (химически чистого).

Центрифугируют 15—20 минут. Мазки делают из нижней части верхнего слоя.

Для дифференциации возбудителя от кислотоупорных сапрофитов в отдельных случаях прибегают к культуральному исследованию.

Посевы производят на яичную и мясо-пептонные среды после обработки патологического материала 10-процентной серной кислотой по упрощенному методу.

Для обработки слизистый и подслизистый слои кишечника тщательно соскабливаются с отрезков кишечника предметным стеклом. Лимфатические железы растираются с песком.

Срок исследования—10—15 дней.

-1- -2- -3- -4- -5- -6- -7- -8- -9- -10- -11- -12- -13- -14- -15- -16- -17- -18- -19- -20- -21- -22- -23- -24- -25- -26- -27- -28- -29- -30- -31- -32- -33- -34- -35-