Реклама
|
Взятие, сохранение и пересылка материала для патологогистологического исследованияДля гистологического исследования посылают кусочки размером в 1 X 15 см2 и толщиной в 0,5—0,7 см. Из измененных целиком органов такие кусочки вырезают из мест, различных по характеру поражения. При наличии изменений гнездного или узелкового характера вырезают пораженный участок (гнездо, фокус) вместе с окружающей непораженной тканью. Из крупных поражений ограниченного характера — опухолей и т. д. вырезают несколько участков — из краев вместе с нормальной тканью, центральной части поражения и вообще из мест, отличающихся по своему макроскопическому виду. При отсутствии видимых простым глазом изменений нужно брать кусочки различных частей органа, например из различных долей печени при посылке для исследования на инфекционную анемию или энцефаломиэлит лошадей. Головной мозг целесообразней всего брать целиком, ввиду различной топографии патологических процессов при разных заболеваниях. При невозможности этого нужно вырезать кусочки с учетом особенностей того заболевания центральной нервной системы, которое в этом случае подозревается. Наиболее принятой и пригодной почти для всех дальнейших гистологических методов обработки является фиксация в 10-проц. водном растворе продажного формалина. Лучше пользоваться формалином нейтральным, т. е. продажным, постоявшим некоторое время в склянке, на дне которой находится толченый мел. При сохранении крупных по объему органов (головного мозга и т. п.) применяют 5-проц. раствор формалина, так как он глубже проникает в толщу ткани. При отсутствии формалина можно сохранить материал (небольшие кусочки его) в 96° спирте, сменив его через сутки. При необходимости заражения опытных животных органы посылают в свежем виде, либо в стерильном 30-проц. водном растворе глицерина. При фиксации в растворе формалина не требуется сохранения фиксируемого материала в плотно закрытой посуде. Не можно проводить в прикрытой стеклом или дощечкой банке, но обязательно в защищенном от света месте. Объем фиксирующей жидкости должен в 10—15 раз превышать объем материала. На дно посуды, в которой материал фиксируют, хорошо положить слой ваты, чтобы пропитывание его шло равномерно. Если в одну банку приходится класть материал от нескольких животных, то лучше всего это делать в сшитых из марли мешочках, пронумеровав каждый. При сохранении объемистых (превышающих толщину паренхиматозных органов или частей их, необходимо для лучшего проникновения фиксирующей жидкости сделать глубокие надрезы ткани и вложить туда кусочки ваты. Номера следует писать тушью на полотне или плотной (чертежной) бумаге. Хорошо сохраняются надписи, сделанные простым (не химическим) карандашом на той же бумаге или на деревянных бирках. Материал, погруженный в раствор формалина, можно пересы-лать в лабораторию в герметической упаковке, сейчас же после взятия. Если же пересылка в жидкости невозможна, то материал выдерживают в растворе формалина до окончания фиксации, завертывают в смоченную тем же раствором вату, затем в пергамент-ную бумагу (клеенку) и в таком виде упаковывают и пересылают. Такой материал сохраняет свою пригодность для гистологического исследования и после ряда дней нахождения в пути. Материал для патогистологического исследования от больных животных (биопсия) берут, насколько это возможно, по тем же правилам, как и от трупа. Например, из опухоли, если ее невозможно удалить целиком, берут кусочки вместе с окружающей здоровой тканью, из кожи вырезают мелкие пластинки, чтобы срез можно было делать в поперечной плоскости. К методу биопсии прибегают чаще всего для определения характера опухолей, но по существу он может быть распространен значительно шире — при диагностике неясных заболеваний кожи, носовой и ротовой полостей, поверхностных лимфатических узлов и т. д. Сохраняться и пересылаться такой материал должен так же, как и материал трупный.
Дезинфекция птичников. Дезинфекция крольчатников -1 |
Реклама
"> |