Реклама
|
Бактериологическая диагностика некробациллезаМатериалом для исследования от павших или убитых животных служат некротические очаги из паренхиматозных органов, при жизни же больного животного исследуются небольшие кусочки ткани, стерильно вырезанные на границе пораженной и живой ткани после тщательной механической очистки некротизированного очага. Лабораторная диагностика некробациллеза осуществляется микроскопическим и бактериологическим исследованиями указанного выше материала, а также введением его опытным животным. Окраску мазков после фиксации (лучше спиртом с эфиром поровну) производят фуксином Циля или синькой Леффлера 2—3 сек. Характерным для Вас. necrophorus при микроскопическом исследовании является: При бактериологическом исследовании материал засевают; на бульон с кусочками печени и бульон с добавлением крови (рН 7,4— 7,6), заливаемые вазелиновым или парафиновым маслом, и на агар сывороточный, печеночный, сахарный или агар с кровью. Выращивание В. necrophorus производят при 37° в анаэробных условиях. На печеночном бульоне через 2—4 дня росте, для В. necrophorus характерно помутнение, а также образование на поверхности кусочков печени ватообразного наложения. На печеночном бульоне с добавлением крови помимо этого отмечается гемолиз всего столбика среды. Наиболее быстрый рост наблюдается на стерильной сыворотке кр. рог. скота или овец. В этом случае В. necrophorus обильно вырастает уже через 24—48 час. в виде плотсых сероватых хлопьев, неравномерно распределяющихся по всему столбику сыворотки. В высоком агаре (печеночном, сахарном) В. necrophorus вырастает в виде мелкозернистых, непрозрачных чечевицеобразных колоний с тончайшими отростками по краям. При росте на сывороточном агаре в чашках Петри (анаэробные условия) В. necrophorus вырастает в виде круглых матовых колоний, имеющих при микроскопировании вид густо переплетающихся между собой волокон. Для получения чистой культуры возбудителя из загрязненного материала необходимы дробные пересевы на ряд пробирок высокого агара, предварительно расплавленного и остуженного до 43—46°. При дробном посеве в последних пробирках изолируются отдельные характерные для В. necrophorus колонии. В случае сильного загрязнения патологического материала прибегают к заражению кроликов и белых мышей. Эмульсия из патологического материала вводится белым мышам в дозе 0,2—0,4 мл подкожно у основания хвоста и кроликам в дозе 0,5—1 мл подкожно или внутрикожно в области брюшных мышц или ПФД кожу уха. У мышей на месте инъекции обнаруживается некроз тканей и через 6—10 дней мыши погибают. У кроликов на месте введения также развивается некротический очаг, захватывающий в дальнейшем соседние участки здоровой ткани. Через 4—5 суток после заражения или при падеже кролика на границе здоровой и пораженной ткани можно выделить в чистой культуре В. necrophorus. У зараженных кроликов отмечаются в печени, легких, мышце сердца некротические очаги, из которых выделяют чистую культуру В. nесгоphorus.
Дезинфекция птичников. Дезинфекция крольчатников -1 |
Реклама
"> |