Бактериологическая диагностика некробациллеза

Материалом для исследования от павших или убитых животных служат некротические очаги из паренхиматозных органов, при жизни же больного животного исследуются небольшие кусочки ткани, стерильно вырезанные на границе пораженной и живой ткани после тщательной механической очистки некротизированного очага.

Лабораторная диагностика некробациллеза осуществляется микроскопическим и бактериологическим исследованиями указанного выше материала, а также введением его опытным животным. Окраску мазков после фиксации (лучше спиртом с эфиром поровну) производят фуксином Циля или синькой Леффлера 2—3 сек.

Характерным для Вас. necrophorus при микроскопическом исследовании является:
1) полиморфность — наряду с длинными нитями, обнаруживаются короткие палочки и даже кокковидные формы,
2) отрицательная окраска по Граму;
3) отсутствие самостоятельного движения и
4) неравномерное окрашивание палочек и нитей.

При бактериологическом исследовании материал засевают; на бульон с кусочками печени и бульон с добавлением крови (рН 7,4— 7,6), заливаемые вазелиновым или парафиновым маслом, и на агар сывороточный, печеночный, сахарный или агар с кровью. Выращивание В. necrophorus производят при 37° в анаэробных условиях. На печеночном бульоне через 2—4 дня росте, для В. necrophorus характерно помутнение, а также образование на поверхности кусочков печени ватообразного наложения. На печеночном бульоне с добавлением крови помимо этого отмечается гемолиз всего столбика среды. Наиболее быстрый рост наблюдается на стерильной сыворотке кр. рог. скота или овец. В этом случае В. necrophorus обильно вырастает уже через 24—48 час. в виде плотсых сероватых хлопьев, неравномерно распределяющихся по всему столбику сыворотки. В высоком агаре (печеночном, сахарном) В. necrophorus вырастает в виде мелкозернистых, непрозрачных чечевицеобразных колоний с тончайшими отростками по краям. При росте на сывороточном агаре в чашках Петри (анаэробные условия) В. necrophorus вырастает в виде круглых матовых колоний, имеющих при микроскопировании вид густо переплетающихся между собой волокон.

Для получения чистой культуры возбудителя из загрязненного материала необходимы дробные пересевы на ряд пробирок высокого агара, предварительно расплавленного и остуженного до 43—46°. При дробном посеве в последних пробирках изолируются отдельные характерные для В. necrophorus колонии.

В случае сильного загрязнения патологического материала прибегают к заражению кроликов и белых мышей. Эмульсия из патологического материала вводится белым мышам в дозе 0,2—0,4 мл подкожно у основания хвоста и кроликам в дозе 0,5—1 мл подкожно или внутрикожно в области брюшных мышц или ПФД кожу уха. У мышей на месте инъекции обнаруживается некроз тканей и через 6—10 дней мыши погибают. У кроликов на месте введения также развивается некротический очаг, захватывающий в дальнейшем соседние участки здоровой ткани. Через 4—5 суток после заражения или при падеже кролика на границе здоровой и пораженной ткани можно выделить в чистой культуре В. necrophorus. У зараженных кроликов отмечаются в печени, легких, мышце сердца некротические очаги, из которых выделяют чистую культуру В. nесгоphorus.

Дезинфекция птичников. Дезинфекция крольчатников -1 
Дезинфекция питомников промысловых животных и служебных собак. Дезинфекция при заболеваниях пчел -2 
Дезинфекция навоза -3 
Дезинфекция почвы. Дезинфекция предметов ухода за животными и сбруи -4 
Дезинфекция товарных вагонов -5 
Дезинфекция шкур и шерсти -6 
Дезинсекция -7 
Дератизация — уничтожение грызунов -8 
Патологоанатомическое вкрытие. Основные правила вскрытия трупов -9 
Вскрытие трупов крупных жвачных, мелких животных и птиц -10 
Протокол вскрытия. Порядок описания органов при вскрытии -11 
Взятие, сохранени и пересылка материала для патологогистологического исследования -12 
Техника изготовления патологоанатомических препаратов -13 
Судебно-ветеринарное исследование трупов -14 
Лабораторно-клиническая диагностика. Общие сведения по клинической диагностике -15 
Исследование сердечно-сосудистой системы -16 
Лихорадка -17 
Исследование мочи. Физическое исследование мочи -18 
Исследование мочи. Химическое исследование мочи -19 
Исследование мочи. Химическое исследование мочи (продолжение) -20 
Неорганизованные осадки мочи. Организованные осадки -21 
Исследование крови -22 
Физические свойства крови -23 
Определение билирубина в сыворотке -24 
Подсчет форменных элементов крови -25 
Лейкоцитарная формула. Лейкоцитарный профиль -26 
Методы исследования микробов. Бактериоскопический метод -27 
Окраска препаратов -28 
Исследование микробов в живом состоянии -29 
Специальные среды -30 
Специальные среды -31 
Индикаторы -32 
Способ фракционированных посевов на плотных питательных средах -33 
Физиологические свойства микробов -34 
Культивирование анаэробов -35 
Метод заражения опытных животных -36 
Подготовка животного и заражение его -37 
Оборудование бактериологического кабинета -38 
Бактериологическая диагностика важнейших инфекционных заболеваний. Сибирская язва -39 
Бактериологическая диагностика эмфизематозного карбункула и злокачественного отека -40 
Бактериологическая диагностика некробациллеза -41 
Бактериологическая диагностика брадзота овец и инфекционной энтеротоксемии овец -42 
Бактериологическая диагностика туберкулеза -43 
Бактериологическая диагностика паратуберкулеза -44 
Бактериологическая диагностика бруцеллеза -45 
Бактериологическая диагностика туляремии -46 
Бактериологическая диагностика пастереллеза - геморрагической септицемии (холеры кур, геморрагической септицемии свиней и прочих животных). Бациллярная рожа свиней -47 
Бактериологическая диагностика диплококковой септицемии телят. Паратиф телят и поросят -48 
Бактериологическая диагностика инфекционного аборта лошадей и мыта. Стригущий лишай -49 
Бактериологическая диагностика лептоспироза -50 
Бешенство. Материал для исследования -51 
Взятие и пересылка патологического материала для исследования на инфекционные заболевания -52 
Таблица. Лейкоцитарная формула домашних животных -53