Бешенство. Материал для исследования

Материалом для исследования служит преимущественно аммонов рог головного мозга, где концентрируется наибольшее количество телец Негри.

В лабораторию на исследование направляют или целиком голову от погибшего животного, или извлеченный из черепа мозг, помещенный в 50-проц. раствор глицерина.

Для микроскопического исследования из аммонова рога готовятся препараты - отпечатки. G этой целью поперечно разрезанные кусочки аммонова рога захватывают пинцетом и прижимают поверхностью разреза к предметному стеклу в нескольких местах.
Окрашивание препаратов чаще всего производится по способу Бормана или Михина. По Борману влажные мазки фиксируют в течение 3 мин. в кислом метиловом спирте (метилового спирта 92 мл + 8 мл уксусной кислоты), после чего просушивают фильтровальной бумагой и быстро фиксируют (2—3 сек.) на пламени, погружают затем на 5 мин. в 60-проц. водный раствор углекислого калия (поташ) и после осторожного промывания водой окрашивают в течение одной минуты с быстрым подогреванием (2—3 сек.) смесью: 2 капли спиртового раствора фуксина и 3 капли насыщенного водного раствора метиленовой сини в 20 мл дестиллированной воды (краска готовится ex tempore); после промывания водой мазки высушивают осторожно фильтровальной бумагой и микроскопируют. Тельца Негри при этом окрашиваются в яркокрасный или земляничный цвет, нервные клетки — в фиолетовый, ядра их — в синий, фон препарата — в розовый.

По способу Михина препараты - отпечатки после 5—10 -минутной фиксации в спирте с эфиром поровну и последующего высушивания окрашивают 30—45 мин. краской Романовского-Гимза (1—2 капли краски на 1 мл дистиллированной воды), затем быстро ополаскивают в подкисленном алкоголе (1 капля ледяной уксусной кислоты на 30 мл 96° спирта), после чего хорошо промывают в воде и высушивают.

Цвет отпечатков при правильной окраске должен быть пре-обладающе красным с фиолетовым оттенком. При микроскопии фон препарата — розовый, нервные клетки окрашены в синий цвет ядра их интенсивно-черного цвета, а тельца Негри розовокрасные с темносиними точечными включениями.
Обнаружение телец Негри при микроскопическом исследовании служит основанием для диагноза бешенства; отсутствие их не исключает его.
При отрицательных результатах микроскопического исследования прибегают к субдуральному заражению кролика эмульсией мозга в физиологическом растворе. В положительных случаях у кролика через 2—3 недели появляется заболевание, которое обычно протекает в паралитической (тихой) форме. На основании атак признаков у кролика и диагносцируется бешенство.

Дезинфекция птичников. Дезинфекция крольчатников -1 
Дезинфекция питомников промысловых животных и служебных собак. Дезинфекция при заболеваниях пчел -2 
Дезинфекция навоза -3 
Дезинфекция почвы. Дезинфекция предметов ухода за животными и сбруи -4 
Дезинфекция товарных вагонов -5 
Дезинфекция шкур и шерсти -6 
Дезинсекция -7 
Дератизация — уничтожение грызунов -8 
Патологоанатомическое вкрытие. Основные правила вскрытия трупов -9 
Вскрытие трупов крупных жвачных, мелких животных и птиц -10 
Протокол вскрытия. Порядок описания органов при вскрытии -11 
Взятие, сохранени и пересылка материала для патологогистологического исследования -12 
Техника изготовления патологоанатомических препаратов -13 
Судебно-ветеринарное исследование трупов -14 
Лабораторно-клиническая диагностика. Общие сведения по клинической диагностике -15 
Исследование сердечно-сосудистой системы -16 
Лихорадка -17 
Исследование мочи. Физическое исследование мочи -18 
Исследование мочи. Химическое исследование мочи -19 
Исследование мочи. Химическое исследование мочи (продолжение) -20 
Неорганизованные осадки мочи. Организованные осадки -21 
Исследование крови -22 
Физические свойства крови -23 
Определение билирубина в сыворотке -24 
Подсчет форменных элементов крови -25 
Лейкоцитарная формула. Лейкоцитарный профиль -26 
Методы исследования микробов. Бактериоскопический метод -27 
Окраска препаратов -28 
Исследование микробов в живом состоянии -29 
Специальные среды -30 
Специальные среды -31 
Индикаторы -32 
Способ фракционированных посевов на плотных питательных средах -33 
Физиологические свойства микробов -34 
Культивирование анаэробов -35 
Метод заражения опытных животных -36 
Подготовка животного и заражение его -37 
Оборудование бактериологического кабинета -38 
Бактериологическая диагностика важнейших инфекционных заболеваний. Сибирская язва -39 
Бактериологическая диагностика эмфизематозного карбункула и злокачественного отека -40 
Бактериологическая диагностика некробациллеза -41 
Бактериологическая диагностика брадзота овец и инфекционной энтеротоксемии овец -42 
Бактериологическая диагностика туберкулеза -43 
Бактериологическая диагностика паратуберкулеза -44 
Бактериологическая диагностика бруцеллеза -45 
Бактериологическая диагностика туляремии -46 
Бактериологическая диагностика пастереллеза - геморрагической септицемии (холеры кур, геморрагической септицемии свиней и прочих животных). Бациллярная рожа свиней -47 
Бактериологическая диагностика диплококковой септицемии телят. Паратиф телят и поросят -48 
Бактериологическая диагностика инфекционного аборта лошадей и мыта. Стригущий лишай -49 
Бактериологическая диагностика лептоспироза -50 
Бешенство. Материал для исследования -51 
Взятие и пересылка патологического материала для исследования на инфекционные заболевания -52 
Таблица. Лейкоцитарная формула домашних животных -53